Название работы	Кол-во страниц	Размер
Инструкция по применению «Микробиологическая диагностика заболеваний...	1	22.06kb.
Урок 11. Тема: Многообразие организмов. Бактерии. Элементы содержания...	1	48.68kb.
Методические указания к лабораторной работе по курсу «Теория волновых...	1	123.87kb.
Методические указания к лабораторной работе по курсу «Теория волновых...	1	109.46kb.
Методические указания к лабораторной работе по статистической радиофизике...	5	670.31kb.
Методические указания к лабораторной работе №14 Волгоград 2013 (076.	1	160.03kb.
Методические указания к лабораторной работе по курсу «Методы и средства...	1	242.39kb.
Инструкция по выполнению лабораторной работы по дисциплине "Химическое...	1	212.95kb.
Методические указания к лабораторной работе №1 по курсу " Основы...	1	166.16kb.
Практикум по экономике труда часть 1 Методические указания	4	703.96kb.
Методические указания к семинарским занятиям	1	236.28kb.
Обоснование различных схем очистки зерноочистительного агрегата,...	1	78.89kb.
Викторина для любознательных: «Занимательная биология»	1	9.92kb.

Приложение 5.

Определение чувствительности культур E. coli к антибиотикам.

Чувствительность штаммов E.coli к антибиотикам диско-диффузионным методом (ДДМ или методом дисков) определяют согласно Методическим указаниям МУК 4.2.1890-04 «Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам»

Принцип метода

ДДМ определения чувствительности микроорганизмов к антибиотикам основан на способности антибактериальных препаратов (АБП) диффундировать из пропитанных ими бумажных дисков в питательную среду, угнетая рост микроорганизмов, посеянных на поверхности агара.

Приготовление питательных сред для определения чувствительности

Для оценки чувствительности культуры E.coli к антибиотикам необходимо использовать только специально предназначенные для этой цели среды. Каждую партию плотных питательных сред перед применением необходимо проверять на пригодность для роста тестируемых микроорганизмов. Для этого используются соответствующие контрольные штаммы, например, E.coli ATCC 25922 или E.coli ATCC 38218. Внутрилабораторный контроль качества среды необходимо проводить при использовании всех известных коммерчески доступных питательных сред, независимо от их производителя.

Выбранная питательная среда для определения чувствительности готовится из сухой среды промышленного производства в соответствии с инструкцией изготовителя. После автоклавирования питательную среду охлаждают до 48–50⁰С и разливают по чашкам слоем толщиной 4 мм (на чашку диаметром 100 мм 25 мл агара, на чашку диаметром 90 мм - 20 мл). Чашки оставляют при комнатной температуре для застывания агара. Приготовленные указанным образом питательные среды предпочтительнее использовать немедленно. Допускается хранение в запаянных полиэтиленовых пакетах в холодильнике при +4 – +8⁰С в течение 5 суток.
Контроль качества питательных сред,

используемых для определения чувствительности

E.coli к антибиотикам.

Контроль роста

Из суточной культуры E.coli ATCC 25922 или E.coli ATCC 38218 (или другой культуры) готовят микробную взвесь, соответствующую по плотности 0,5 по стандарту МакФарланда (содержащую приблизительно 1,5х10⁸ КОЕ/мл), затем из этой взвеси готовят серию последовательных десятикратных разведений. На приготовленные чашки с проверяемой средой высевают по 0,1 мл взвеси -5, -6, -7 разведений, содержащих соответственно 1х10³, 1х10², 1х10¹ КОЕ/мл. При хороших питательных свойствах среды должен отмечаться рост микроорганизмов из -6, -7 разведений.

Интегральный контроль качества определения чувствительности

Наиболее доступным интегральным методом оценки качества определения чувствительности патогенов к антибиотикам является сопоставление результатов определения чувствительности (диаметров зон подавления роста) контрольных (референтных) штаммов микроорганизмов с соответствующими показателями, приведенными в их паспортной характеристике. Тестирование контрольных штаммов проводят в соответствии с описанными выше методами, параллельно тестированию клинических изолятов.

Диски с антибиотиками

Для получения правильных результатов определения чувствительности ДДМ необходимо строго соблюдать правила хранения и использования коммерческих дисков, в противном случае содержание в них антибиотиков может снизиться ниже допустимого уровня (прежде всего в результате увлажнения) еще до истечения срока годности.

Долговременное хранение дисков с АБП осуществляется в герметичной упаковке в морозильной камере при температуре –18^оС и ниже. Небольшие партии дисков, используемые при повседневной работе, можно хранить в холодильнике при температуре +4 – +8⁰С, плотно укупоренными так, чтобы гарантировать невозможность попадания во флакон влаги, кроме того для дополнительной защиты от влаги во флаконах (картриджах) с дисками коммерческого изготовления содержится специальный влагопоглотитель (силикагель).

Флаконы (картриджи) с дисками следует извлекать из холодильника за 1 ч до начала работы и выдерживать герметично закрытыми до достижения ими комнатной температуры, что предотвращает образование конденсата на дисках после открывания флаконов.

Внимание! Для получения достоверных результатов используйте диски отечественных производителей на средах АГВ или типа АГВ производства филиала «Питателные среды г. Махачкала ООО «Микроген» и ФБУН ГНЦПМБ, а среду Мюллер-Хинтона только с импортными дисками.

Приготовление бактериальной суспензии и инокуляция

При определении чувствительности ДДМ используют стандартный инокулюм, соответствующий по плотности 0,5 по стандарту МакФарланда и содержащий примерно 1,5х10⁸ КОЕ/мл. Инокулюм следует использовать в течение 15 минут после приготовления. Для засева приготовленных чашек с питательной средой стандартный инокулюм наносят пипеткой на поверхность агаровой пластинки чашки Петри в объеме 1-2 мл, равномерно распределяют взвесь микроорганизмов по поверхности питательной среды покачиванием, после чего удаляют избыток инокулюма пипеткой. Приоткрытые чашки подсушивают при комнатной температуре в течение 10-15 мин.

Аппликация дисков и инкубация

Не позднее, чем через 15 мин после инокуляции тестируемого микроба на поверхность питательной среды наносят диски с АБП. Аппликацию дисков проводят с помощью стерильного пинцета или автоматического диспенсера. Расстояние от диска до края чашки и между дисками должно быть 15-20 мм. Таким образом, на одну чашку диаметром 100 мм следует помещать не более 6 дисков с АБП. Диски должны равномерно контактировать с поверхностью агара, для чего их следует аккуратно прижать пинцетом.

Непосредственно после аппликации дисков чашки Петри с посевами помещают в термостат и инкубируют при температуре 37^оС в течение 18-24 ч. Увеличение интервала времени между нанесением дисков на поверхность среды и началом инкубации (а соответственно – началом роста исследуемой культуры микроорганизма) приводит к "преддиффузии" АБП в агар и к увеличению диаметра зоны подавления роста.

Учет результатов

После окончания инкубации чашки помещают кверху дном на темную матовую поверхность так, чтобы свет падал на них под углом в 45⁰ (учет в отраженном свете). Диаметр зон задержки роста измеряют с точностью до 1 мм, предпочтительнее пользоваться штангенциркулем или кронциркулем.

При измерении зон задержки роста испытуемой культуры следует учитывать лишь зону полного подавления видимого роста бактерий. Не следует обращать внимания на очень мелкие колонии, выявляемые в пределах зоны задержки роста тестируемого микроба только при особых условиях освещения или увеличении, и едва заметный налет у края зоны

Крупные колонии, выявляемые в пределах четкой зоны подавления роста тестируемого микроба, свидетельствуют о наличии посторонней микрофлоры или о гетерорезистентности популяции микроорганизмов, в этом случае необходимо повторить идентификацию микроорганизма, формирующего эту колонию, и определение чувствительности этого штамма.

В таблице приведена антибиотикограмма штамма E.coli O104:H4 и интерпретация результатов определения чувствительности E.coli к антибиотикам по величине зон подавления роста испытуемого штамма.
Справочная таблица для определения чувствительности к антибиотикам штаммов E.coli, подозрительных на принадлежность их к STEC O104:H4

Тестируемый антибиотик	Содержание антибиотика в диске, мкг	Чувствительность E.coli O104:H4	Диаметр зон подавления роста, мм
			S	I	R	Контрольных штаммов Е.coli ATCC 25922 Е.coli ATCC 35218
1	2	3	4	5	6	7
Ампициллин	10	R	≥ 17	14-16	≤ 13	16-22
Амоксициллин/клавуланат	20/10	R	≥ 18	14-17	≤ 13	18-24
Цефуроксим	30	R	≥ 18	15-17	≤ 14	20-26
Цефокситин	30	R	≥18	15-17	≤ 14	23-29
Цефподоксим	10	R	≥ 21	18-20	≤17	23-28
Цефотаксим	30	R	≥23	15-22	≤ 14	29-35
Имипенем	10	S	≥ 16	14-15	≤ 13	26-32
Меропенем	10	S	≥ 16	14-15	≤ 13	28-34
Налидиксовая кислота	30	R	≥ 19	14-18	≤13	22-28
Норфлоксацин	10	S	≥ 17	13-16	≤ 12	28-35
Ципрофлоксацин	5	S	≥ 21	16-20	≤ 15	30-40
Амикацин	30	S	≥ 17	15-16	≤ 14	19-26
Гентамицин	10	S	≥ 15	13-14	≤ 12	19-26
Тобрамицин	10	S	≥ 15	13-14	≤ 12	18-26
Канамицин	30	S	≥ 18	14-17	≤ 13	17-25
Хлорамфеникол	30	S	≥ 18	13-17	≤ 12	21-27
Тетрациклин	30	R	≥ 15	12-14	≤ 11	18-25
Нитрофурантоин	300	S	≥ 17	15-16	≤ 14	20-25
Ко-тримоксазол (1/19)	1,25/23,75	R	≥ 16	11-15	≤ 10	23-29
Фосфомицин*	200	S	≥ 16	13-15	≤ 12	22-30

* - для фосфомицина в питательную среду необходимо добавить глюкозо-6-фосфат до концентрации 25 мкг/мл

Приложение 6

ИНСТРУКЦИЯ ПО ПРИМЕНЕНИЮ

Иммунохроматографического экспресс-теста для определения энтерогеморрагических E.coli O157
Принцип работы иммунохроматографического теста основан на взаимодействии антигенов, находящихся в образце исследуемого материала с антителами, меченными золотом (Singlepath^® E.coli O157 или аналог).

Иммунохроматографический тест представляет собой диагностическую тест-панель с круглой лункой для добавления образца, овальным окном с тестовой (Т) и контрольной (С) зонами.

1. 
   Образец добавляется в круглую лунку.
   
2. 
   Образец адсорбируется подложкой и взаимодействует со специфичными к E.coli O157 антителами мечеными золотом.
   
3. 
   В присутствии антигенов E.coli O157 образуется комплекс с мечеными антителами, который мигрирует до зоны связывания в тестовой зоне (Т).
   
4. 
   Зона связывания (Т) содержит антитела к комплексу антиген-антитело. В результате образуется четкая красная линия.
   
5. 
   Оставшийся образец продолжает движение к контрольной зоне (С) и образуют четкую красную линию, указывающую на то, что тест работает правильно.
   

Чувствительность метода - 1 клетка (КОЕ) E.coli O157 в 25 г образца
Ограничения метода

1. 
   На результат не влияет наличие сопутствующих микроорганизмов
   

Условия хранения

Иммунохроматографический тест для определения E.coli O157 стабилен до даты, указанной на упаковке, при хранении в условиях +2-8^оС.

Проведение анализа

1. 
   Смешать 25 г (мл) образца с 225 мл среды обогащения. Выбор среды обогащения зависит от типа продукта. Среда для молочных продуктов – модифицированный триптиказо-соевый бульон с новобиоцином. Среда для мясных продуктов - модифицированный бульон ЕС с новобиоцином,. При необходимости гомогенизировать образец.
   
2. 
   Инкубировать 18-24 ч при 37оС
   
3. 
   Перенести примерно 1-2 мл культуральной жидкости в полипропиленовую (или стеклянную) пробирку и инкубировать на кипящей водяной бане 15 мин.
   
4. 
   Дать остыть пробе до комнатной температуры.
   

Проведение тестирования

1. 
   Перед использованием обогащенный образец и иммунохроматографический тест должны быть комнатной температуры (обычно тесты хранятся в холодильнике).
   
2. 
   Вскрыть пакет из фольги, в который упакован тест.
   
3. 
   Положить тест на ровную поверхность и отмаркировать (указать номер исследуемого образца). Тестирование должно быть проведено в течение 2 часов после вскрытия фольги!
   
4. 
   Используя микропипетку и одноразовый наконечник, добавить 150 мкл термически инактивированной и охлажденной культуральной жидкости в круглую лунку для образца.
   
5. 
   Считать результаты через 20 минут после добавления образца.
   

Интерпретация результатов

1. 
   Результаты теста учитываются только при наличии четкой красной линии в контрольной зоне (С) через 20 минут.
   
2. 
   Образец считается положительным, если после 20 минут или ранее красные линии образовались как в тестовой (Т), так и в контрольной (С) зоне.
   
3. 
   Образец считается отрицательным, если красная линия отсутствует в тестовой зоне (Т), но присутствует в контрольной зоне (С).
   
4. 
   Тест следует повторить, если красные линии отсутствуют как в тестовой, так и в контрольной зоне через 20 минут.
   

Приложение 7

ИНСТРУКЦИЯ

ПО ПРИМЕНЕНИЮ НАБОРА РЕАГЕНТОВ ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ

СПЕЦИФИЧЕСКИХ УЧАСТКОВ ДНК ЭНТЕРОГЕМОРРАГИЧЕСКИХ ESCHERICHIA COLI O157 В БАКТЕРИАЛЬНЫХ КУЛЬТУРАХ

И КЛИНИЧЕСКОМ МАТЕРИАЛЕ

1. 
   НАЗНАЧЕНИЕ
   

Набор предназначен для выявления специфических участков ДНК энтерогеморрагических  Escherichia coli в бактериальных культурах, клиническом материале и пищевых прокуктах методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с электрофоретической детекцией продуктов амплификации в агарозном геле.

2. 
   ХАРАКТЕРИСТИКА НАБОРА
   

Набор содержит компоненты, необходимые для проведения ПЦР, в результате которой происходит амплификация фрагментов генов интимина (eaeA), шига-токсина 1 (stx1), шига-токсина 2 (stx2), гена rfb, контролирующего синтез первичных боковых цепей ЛПС (определяют серогруппу O157). Получаемая в результате ПЦР комбинация из этих фрагментов позволяет выявлять и дифференцировать различные токсин-продуцирующие штаммы энтерогеморрагических E. coli.

В качестве внутреннего контроля используется дополнительная пара праймеров на консервативную область гена 16S rRNA. Это позволяет учесть возможное ингибирование реакции и исключить ложно-отрицательный результат.

2.1 Принцип действия

В основе метода лежит полимеразная цепная реакция с использованием специфических олигонуклеотидных праймеров. Детекция продуктов амплификации осуществляется электрофорезом в агарозном геле.

2.2 Состав набора (на 100 реакций)

- ПЦР-буфер - 2 пробирки по1,2 мл

-Taq-POL (Taq I –полимераза) - 40 мкл

- смесь Мульти O157 - 500 мкл

- dNTP (смесь дезоксинуклеотидтрифосфатов) - 50 мкл

- dH₂O (деионизованная вода) - 400 мкл

- мин. масло (минеральное масло) - 2,0 мл

- O157+ (положительный контроль) - 100 мкл

3. ОБОРУДОВАНИЕ И МАТЕРИАЛЫ

• 
  ПЦР–бокс или отдельный стол, снабженный УФ-лампой
  
• 
  Твердотельный термостат или водяная баня
  
• 
  Два набора автоматических пипеток переменного объема
  
• 
  Одноразовые наконечники для автоматических пипеток
  
• 
  Пробирки для микропроб объемом 1,5 мл
  
• 
  Пробирки для ПЦР на 0,5 мл или 0,2 мл
  
• 
  Вортекс-центрифуга
  
• 
  Центрифуга настольная
  
• 
  Термоциклер
  
• 
  Охладитель проб
  
• 
  Источник тока
  
• 
  Электрофорезная камера
  
• 
  Источник УФ
  
• 
  Весы лабораторные 2 класса точности
  
• 
  Холодильник бытовой с морозильной камерой
  
• 
  Отдельный халат и одноразовые перчатки
  
• 
  Емкость для сброса использованных наконечников
  
• 
  Вода дистиллированная
  

4 ПРОВЕДЕНИЕ АНАЛИЗА

4.1. Приготовление образцов для анализа в ПЦР: бактериальные клетки суспендировать в 100 мкл стерильной дистиллированной воды до концентрации 10⁷ – 10⁹ кл/мл в пробирках 1,5 мл типа «Эппендорф». Пробы прогреть при температуре 98 ºС в течение 15 минут (твердотельный термостат или водяная баня). Центрифугировать 5 минут при 2000-3000 g (4000-6000 об/мин.). Для многократного использования хранить при температуре минус 20 ^оС.

Для приготовления образцов из клинического материала использовать коммерческие наборы для выделения ДНК из клинического материала.

4.2 Проведение ПЦР

1. Перед проведением ПЦР-анализа внести в одну или обе (в зависимости от объема исследования) пробирки «ПЦР-буфер» по 20 мкл фермента TaqI-полимеразы из пробирки «Taq-POL». Полученной смеси «ПЦР-буфер+» в каждой пробирке достаточно для проведения ПЦР-анализа 50 образцов. Смесь ПЦР-буфера с TaqI-полимеразой «ПЦР-буфер+» можно хранить при температуре + 4 ºС не более 6 мес. Отдельные компоненты «ПЦР-буфер» и «Taq-POL» можно хранить при минус 20 ºС в течение 1 года.

2. Перенести содержимое пробирки «dNTP» в пробирку «смесь Мульти O157» . Полученную смесь «Мульти O157 с dNTP», рассчитанную на 100 реакций, можно хранить при температуре + 4 ºС в течение 6 мес.

3. Включить охладитель проб (для охлаждения штативов с пробирками можно использовать ледяные блоки).

4. В охлажденный штатив расставить ряд пробирок для ПЦР (0,5 мл). Количество пробирок должно соответствовать количеству анализируемых образцов с учетом двух дополнительных пробирок, предназначенных для отрицательного и положительного контролей.

5. Внести на дно каждой пробирки по 20 мкл смеси «ПЦР-буфер+» (ПЦР-буфер с Taq I –полимеразой, п.1).

6 Добавить во все пробирки по 5 мкл раствора «смесь Мульти O157 с dNTP» (п.2).

7. Добавить во все пробирки по одной капле (~20 мкл) минерального масла. Если используется термоциклер с подогреваемой крышкой, то минеральное масло не добавлять.

8. В пробирку для отрицательного контроля внести 5 мкл деионизованной воды - «dH₂O».

9. В пробирки для исследуемых образцов внести по 5 мкл лизатов клеток или 5 мкл образцов, выделенных из клинических проб.

10. В пробирку для положительного контроля внести 5 мкл раствора «O157+»

11. Все пробирки встряхнуть на вортексе, жидкость осадить на дно пробирок кратковременным откручиванием на вортекс-центрифуге. Пробирки поместить в блок термоциклера после прогрева прибора в режиме паузы при 95°С (режим горячего старта).

12. Провести реакцию амплификации по программе: 1-й цикл: 95°С - 5 мин, 58°С - 1 мин, 73°С - 1 мин; далее 30-40 циклов: 94°С – 30 сек, 60°С – 30 сек, 72°С – 30 сек; в конце: 1 цикл: 72°С - 3 мин, 10°С – охлаждение (хранение). При тестировании лизатов клеток достаточно 30 циклов реакции.

13. После окончания реакции амплификации пробирки отправить в комнату для анализа продуктов ПЦР. Пробы после амплификации можно хранить в течение нескольких дней при 4-8 °С и несколько месяцев при минус 20 °С.

4.3 Анализ продуктов ПЦР

4.3.1 Приготовление агарозных гелей для электрофореза

Трис-боратный буфер (ТБЕ) для электрофореза: готовится концентрированный (пятикратный) буфер 5×ТБЕ (54 г Трис-осн., 27 г борной кислоты, 20 мл 0,5 М ЭДТА, рН 8,0 растворяется в 1 л дистиллированной воды), который разводится перед проведением анализа (к 200,0 мл 5×ТБЕ добавить 800,0 мл дистиллированной воды).

Буфер для нанесения образцов (десятикратный): 0,025 г бромфенолового синего; 4 мл глицерина; 5 мл 0,5 M ЭДТА, pH 8,0; довести до 10 мл дистиллированной водой.

Раствор 1,5 % агарозы: взвесить 1,5 г агарозы, растворить в 100 мл ТБЕ буфера, поставить в кипящую водяную баню и выдержать 30 минут до полного растворения агарозы. Для приготовления агарозы можно использовать СВЧ-печь. Раствор охладить до 45-50 С и залить необходимый гель (длина рабочей зоны геля должна быть не менее 8 см). Агарозные гели можно приготовить за время проведения реакции ПЦР.

4.3.2 Электрофорез в агарозном геле

Детекция продуктов амплификации осуществляется электрофорезом в агарозном геле.

15-20 мкл реакционной смеси (ПЦР-продукт) из каждой пробирки смешать с 2 мкл буфера для нанесения образцов, внести в лунки агарозного геля и провести электрофорез при 10 в/см в течение 30-60 минут, бромфеноловый краситель должен пройти до нижней границы геля. Гель окрасить в водном растворе бромистого этидия (5 мкг/мл) в течение 30 минут, с последующей 20 минутной отмывкой в дистиллированной воде.

Внимание! Бромид этидия – канцерогенное соединение; работать только в перчатках, избегать попадания на кожу и слизистые, при попадании на кожу или слизистые тщательно промыть соответствующий участок водой.

Документация результатов проводится визуально при просмотре геля на УФ-трансиллюминаторе с длиной волны 254-360 нм и фотографировании гелей с использованием оранжевого светофильтра.

5 УЧЕТ РЕЗУЛЬТАТОВ

Результат ПЦР-анализа учитывается по наличию или отсутствию на электрофореграмме специфических красно-оранжевых флюоресцирующих полос амплифицированной ДНК..

Положительный контрольный образец ДНК. Сигнал от положительного контроля виден как пять фрагментов следующих размеров: 1250 п.н. (ген 16S rRNA), 690 п.н. - (eae-ген), 480 п.н. - (stxII-ген), 400 п.н. - (rfb-ген), 330 п.н. - (stxI-ген) (рис. 1).

Отрицательный контрольный образец: в амплификате отрицательного контрольного образца не должно наблюдаться красно-оранжевых флюоресцирующих полос, соответствующих ампликонам положительного контроля. Наличие таких полос свидетельствует о контаминации используемого набора реагентов. В этом случае необходимо повторное исследование. При проведении ПЦР белее 35 циклов возможно появление фрагмента 1250 п.н. гена 16S rRNA (следствие использования рекомбинантной Taq I –полимеразы).

Анализируемые образцы.

- при наличии в пробе анализируемого образца ДНК возбудителя геморрагического колита в геле должны наблюдаться четыре красно-оранжевые флюоресцирующие полосы специфических фрагментов ДНК размером 690 п.н. - (ген eae), 480 п.н. - (ген stx2), 400 п.н. - (ген rfb) и 330 п.н. - (ген stx1), а также флюоресцирующая полоса, соответствующая фрагменту 1250 п.н. гена 16S rRNA (внутренний контроль) (рис. 1);

- при отсутствии в пробе анализируемого образца ДНК шига-токсин содержащих E.coli серогруппы O157 и наличии ДНК бактерий других видов в геле должна наблюдаться только одна флюоресцирующая полоса, соответствующая фрагменту 1250 п.н. гена 16S rRNA (внутренний контроль);

- отсутствие флюоресцирующей полосы, соответствующей фрагменту 1250 п.н. гена 16S rRNA, говорит об ингибировании реакции и необходимости повторного исследования или об отсутствии в данной пробе какой-либо бактериальной ДНК.

6 МЕРЫ ПРЕДОСТОРОЖНОСТИ

Организация работ на этапах приема, разбора и первичной обработки материала, подготовки проб и выделения нуклеиновых кислот, а также обеззараживания проб проводится в соответствии с требованиями СП 1.3.2322-08 «Безопасность работы с микроорганизмами III – IV групп патогенности и гельминтами». Работа на остальных этапах ПЦР-анализа проводится как с обеззараженным материалом.

7 УСЛОВИЯ ХРАНЕНИЯ И ЭКСПЛУАТАТАЦИИ НАБОРА

Набор необходимо хранить при температуре 2-8 С в течение 6 месяцев.

Транспортирование: при температуре от 2 С до 8 С.

Приложение 8

ИНСТРУКЦИЯ

по применению набора реагентов латексной диагностики для быстрой идентификации возбудителя геморрагического колита Escherichia coli O157:H7

1. Назначение и характеристика тест-системы

Тест системана для экспресс-выявления и идентификации микробных клеток Escherichia coli O157:H7 при проведении лабораторных исследований и представляет собой набор из трех флаконов емкостью 5 мл.

Тест система обеспечивает типоспецифическое выявление и идентификацию микробных клеток E. coli O157:H7 в суспензиях, полученных из колоний микроорганизмов, выращенных на пластинках ГРМ-агара. Специфическими мишенями данного теста являются липополисахарид O157 и жгутиковый антиген H7 E. coli O157:H7.

2. Состав тест-системы

В состав тест системы входят:

• 
  флакон 1 (латексный тест), содержит 0,5 % взвеси частиц монодисперсного полистирольного альдегидного латекса диаметром 0,65 мкм, сенсибилизированного иммуноглобулинами G, выделенными из сывороток крови кроликов, содержащих антитела к липополисахариду O157 и жгутиковому антигену H7 E. coli O157:H7;
  

• 
  флакон 2 (контрольный тест), содержит 0,5 % взвеси частиц монодисперсного полистирольного альдегидного латекса, сенсибилизированного иммуноглобулинами из сывороток крови не иммунизированных кроликов;
  
• 
  флакон 3 (позитивный контроль), содержит инактивированную нагреванием взвесь культуры E. coli O157:H7, концентрация 10 единиц по ОСО 42-28-85 П.
  

3. Принцип действия

Микробные клетки E. coli O157:H7, присутствующие в исследуемой пробе, взаимодействуют с латексными частицами, сенсибилизированными антителами против липополисахаридого антигена O157 и жгутикового антигена H7 с последующим образованием видимых агглютинатов.

4. Меры предосторожности

Подготовку материала для исследования проводят с соблюдением специальной техники безопасности в соответствии с СП 1.3.2322-08 «Безопасность работы с микроорганизмами I-IV групп патогенности и возбудителями паразитарных болезней».

5. Проведение анализа

5.1. Материалы и оборудование

• 
  0,01 моль натрий-фосфатный буфер, рН 7,4 (ФБР);
  
• 
  механические дозаторы переменного объема, позволяющие отбирать объемы жидкости 0,1; 0,01 и 0,005 мл;
  
• 
  предметные стекла;
  
• 
  стеклянные палочки.
  

5.2. Анализируемые образцы

5.2.1. Подозрительные колонии микроорганизмов, выращенные на пластинках ГРМ-агара в аэрофильных условиях в течение 18-24 часов при температуре 37 С.

Примечание – Анализируемые образцы не подвергать автоклавированию.

5.3. Анализ

5.3.1. На предметное стекло нанести 20 мкл физиологического раствора, стеклянной палочкой снять часть колонии тестируемого штамма(исследуемый образец) и растереть в капле физиологического раствора до получения гомогенной суспензии.

5.3.2. Извлечь необходимое количество упаковок латексной тест-системы из холодильника и выдержать при комнатной температуре 20 минут.

Примечание – перед применением латексный тест тщательно суспендировать до гомогенного состояния.

5.3.3. К исследуемому образцу механическим дозатором нанести на предметное стекло 0,015 мл латексного теста (флакон № 1) и оба компонента осторожно перемешать стеклянной палочкой до получения гомогенной суспензии. Реакционную смесь на стекле инкубировать при комнатной температуре 2 минуты, периодически покачивая, а затем регистрировать результаты реакции.

5.3.4. Проверка качества контрольного теста. К 0,02 мл исследуемого образца, нанесенного на предметное стекло, добавить 0,015 мл контрольного теста (флакон № 2) и оба компонента осторожно перемешать стеклянной палочкой до получения гомогенной суспензии. Реакционную смесь на стекле инкубировать при комнатной температуре 2 минуты, периодически покачивая, а затем регистрировать результаты реакции.

5.3.5. Контроль специфичности латексного теста. К 0,02 мл позитивного контроля (флакон № 3), нанесенного на предметное стекло, добавить 0,015 мл латексного теста (флакон № 1) и оба компонента осторожно перемешать стеклянной палочкой до получения гомогенной суспензии. Реакционную смесь на стекле инкубировать при комнатной температуре 2минуты, периодически покачивая, а затем регистрировать результаты реакции.

6. Регистрация и учет результатов

Учет результатов по п. 5.3.3, 5.3.4 и 5.3.5 провести через 2 минуты, руководствуясь таблицей.

Таблица 1 – Интерпретация результата

Положительный результат	Наличие видимой четкой окрашенной агглютинации частиц при добавлении к исследуемому образцу латексного теста (флакон 1). Наличие видимой четкой окрашенной агглютинации частиц при добавлении к позитивному контролю (флакон 3) латексного теста (флакон 1). Отсутствие агглютинации, фон равномерно мутный при добавлении к исследуемому образцу контрольного теста (флакон 2).
Отрицательный результат	Отсутствие агглютинации, фон равномерно мутный при добавлении к исследуемому образцу латексного теста (флакон 1). Наличие видимой четкой окрашенной агглютинации частиц при добавлении к позитивному контролю (флакон 3) латексного теста (флакон 1).
Тест не работает	Отсутствие агглютинации, фон равномерно мутный при добавлении к позитивному контролю (флакон 3) латексного теста (флакон 1).

7. Условия хранения и эксплуатации латексной тест-системы

Набор реагентов тест системы необходимо хранить в герметично закрытых флаконах в сухом защищенном от света месте при температуре 2-8ºС. Допускается транспортировка набора реагентов тест системы при температуре 2-25 ºС в срок не более 7 суток.

Примечание – Не замораживать.

Срок годности – 1 год. Для получения надежных результатов необходимо строгое соблюдение настоящей инструкции по применению.

<< предыдущая страница